细胞周期具有四个连续阶段：G0 / G1，S，G2和M。在细胞通过细胞周期的过程中，其DNA在S（合成）阶段复制，并在M（有丝分裂）阶段在两个子细胞之间平均分配。这两个阶段由两个间隙阶段分开：G0 / G1和G2。这两个间隙阶段为细胞提供了生长时间，并使它们的蛋白质和细胞器的质量增加了一倍。在进入下一阶段的细胞周期之前，细胞还可以使用它们来检测内部和外部条件。细胞通过细胞周期的传递受到许多不同调节蛋白的控制。该检测试剂盒旨在通过在活细胞中使用我们专有的Nuclear Red CCS2检测细胞周期进程和增殖。可以通过流式细胞术确定给定样品中处于G0 / G1，S和G2 / M期的细胞以及亚G1期处于凋亡之前的细胞的百分比。可以用流式细胞仪（PE-Texas Red通道）检测用Nuclear Red CCS2染色的细胞。

样品实验方案

简要概述

1. 用5×10⁵至1×10⁶细胞/ mL的密度制备含测试化合物的细胞
2. 将1 μL 500X Nuclear Red CCS2添加到0.5 mL细胞溶液中
3. 在37°C，5％CO₂下孵育10-30分钟
4. 使用带有PE-Texas Red通道的流式细胞仪分析细胞（Ex / Em = 488 nm / 615 nm）

实验步骤

1.对于每个样品，以0.5×10⁵至1×10⁶细胞/ mL的密度在0.5 mL温暖的培养基或自备缓冲液中制备细胞。注意：应单独评估每个细胞系，以确定最佳细胞密度。

2.用测试化合物处理细胞一段时间，以诱导细胞凋亡，细胞周期停滞或其他细胞周期功能。

3.在含有生长培养基的细胞中加入1 μL 500X Nuclear Red CCS2（组分A）。

4.将细胞在37°C，5％CO₂培养箱中孵育10至30分钟。注意：对于贴壁细胞，用0.5 mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整，并在用Nuclear Red CCS2孵育之前用含血清的培养基洗涤一次。合适的孵育时间取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。优化每个实验的孵育时间。染色前无需固定细胞，因为Nuclear Red CCS2具有细胞渗透性。

5.可选：将细胞以1000 rpm的速度离心4分钟，然后将细胞重悬于0.5 mL的测定缓冲液（组分B）或自备的缓冲液中。

6.使用带有PE-Texas Red通道（Ex / Em = 488/615 nm）的流式细胞仪检测荧光强度。

参考文献

Cell cycle synchronization of Escherichia coli using the stringent response, with fluorescence labeling assays for DNA content and replication
Authors: Ferullo DJ, Cooper DL, Moore HR, Lovett ST.
Journal: Methods (2009): 8

DNA replication, cell cycle progression and the targeted gene repair reaction
Authors: Engstrom JU, Kmiec EB.
Journal: Cell Cycle (2008): 1402

Morin inhibits the growth of human leukemia HL-60 cells via cell cycle arrest and induction of apoptosis through mitochondria dependent pathway
Authors: Kuo HM, Chang LS, Lin YL, Lu HF, Yang JS, Lee JH, Chung JG.
Journal: Anticancer Res (2007): 395

Direct control of cell cycle gene expression by proto-oncogene product ACTR, and its autoregulation underlies its transforming activity
Authors: Louie MC, Revenko AS, Zou JX, Yao J, Chen HW.
Journal: Mol Cell Biol (2006): 3810

Cell cycle markers for live cell analyses
Authors: Easwaran HP, Leonhardt H, Cardoso MC.
Journal: Cell Cycle (2005): 453

Dynamic relocalization of hOGG1 during the cell cycle is disrupted in cells harbouring the hOGG1-Cys326 polymorphic variant
Authors: Luna L, Rolseth V, Hildrestr and GA, Otterlei M, Dantzer F, Bjoras M, Seeberg E.
Journal: Nucleic Acids Res (2005): 1813

Dynamics of relative chromosome position during the cell cycle
Authors: Essers J, van Cappellen WA, Theil AF, van Drunen E, Jaspers NG, Hoeijmakers JH, Wyman C, Vermeulen W, Kanaar R.
Journal: Mol Biol Cell (2005): 769

Cell cycle regulation of the murine 8-oxoguanine DNA glycosylase (mOGG1): mOGG1 associates with microtubules during interphase and mitosis
Authors: Conlon KA, Zharkov DO, Berrios M.
Journal: DNA Repair (Amst) (2004): 1601

Description of a flow cytometry approach based on SYBR-14 staining for the assessment of DNA content, cell cycle analysis, and sorting of living normal and neoplastic cells
Authors: Nunez R, Garay N, Villafane C, Bruno A, Lindgren V.
Journal: Exp Mol Pathol (2004): 29

Differential roles of STAT1alpha and STAT1beta in fludarabine-induced cell cycle arrest and apoptosis in human B cells
Authors: Baran-Marszak F, Feuillard J, Najjar I, Le Clorennec C, Bechet JM, Dusanter-Fourt I, Bornkamm GW, Raphael M, Fagard R.
Journal: Blood (2004): 2475